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VOL. 73 (4), 1199-1236, 2007 BIOCATÁLISIS APLICADA A LA QUÍMICA...

del cofactor se vuelve complicado, siendo esta la razón por la que la
mayoría de los ensayos descritos en bibliografía se realizan con
células enteras. Se encuentra descrito el uso de cepas de Acetobacter
(40, 41) y Gluconobacter (42) entre otras.

ii) Debido a que los aldehídos o cetonas formados están unidos de
un modo más fuerte a la zona hidrofóbica del sitio activo de la enzi-
ma que cualquier alcohol, la inhibición por acumulación de producto
suele ser un fenómeno común en este tipo de reacciones (43).

iii) La oxidación de alcoholes normalmente transcurre de un
modo más favorable a elevados pH. En estas condiciones los cofac-
tores y los productos (particularmente los aldehídos) son inestables.

Dentro de una colaboración con el grupo del Dr. Molinari hemos
llevado a cabo la oxidación de alcoholes primarios a aldehídos sin
producción de ácidos carboxílicos (44, 45). Como ejemplo diremos
que se han obteniendo conversiones de 2-feniletanol en 2-fenilacetal-
dehído próximas al 60% empleando células de Acetobacter aceti in-
movilizadas en agarosa y en poliacrilamida (45).

La oxidación de alcoholes secundarios racémicos con fines de
lograr la desracemización se ha realizado con una serie de microor-
ganismos descritos por el grupo por primera vez (Tabla 10). En esta
tabla se comparan los resultados obtenidos con los microorganismos
en las condiciones de crecimiento y reposo y con las células liofili-
zadas.

TABLA 10. Actividad comparada de los microorganismos seleccionados,
en diferentes estados fisiológicos (46).

Microorganismo Código Ferment. No Crecim. Liofilizada

(% X) (% X) (% X)

Williopsis californica CBS 2158 94 74 12
Williopsis saturnus NCYC 23 78 50 15
Fellomyces sp. CBS 8616 61 41 9
Pachysolen tannophilus NCYC 1597 60 53 13
Kluyveromyces lactis CBS 2896 56 28 6
Arthroascus fermentans CBS 7830 56 36 11
Tetracladium setigerum IMI 94061 23 15 4

Coniochaeta velutina CBS 981.68 23 20 9

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